Molecular detection of antimicrobial resistance genes in multidrug-resistant Gram-negative bacteria isolated from clinical samples in two hospitals in Niger

O. Abdoulaye, I. Abdoulaye, M. Alassane Halawen, A. K. Ibrahim Mamadou,, S. Maman Sani Falissou, S. Adamou Amatagas, H. Boureima, B. Boubacar Issaka, H. Ide, A. Yacouba, B. Sidi Maman Bacha, S. Chaibou, I. Hamadou, M. L. Harouna Amadou, S. Oumane, M. Doutchi, S. Mamadou
{"title":"Molecular detection of antimicrobial resistance genes in multidrug-resistant Gram-negative bacteria isolated from clinical samples in two hospitals in Niger","authors":"O. Abdoulaye, I. Abdoulaye, M. Alassane Halawen, A. K. Ibrahim Mamadou,, S. Maman Sani Falissou, S. Adamou Amatagas, H. Boureima, B. Boubacar Issaka, H. Ide, A. Yacouba, B. Sidi Maman Bacha, S. Chaibou, I. Hamadou, M. L. Harouna Amadou, S. Oumane, M. Doutchi, S. Mamadou","doi":"10.4314/ajcem.v25i2.6","DOIUrl":null,"url":null,"abstract":"Background: According to the World Health Organization (WHO), bacterial resistance to antibiotics is a global public health challenge, which is also developing in Niger. The aim of this study was to determine the prevalence of antibiotic resistance genes in Gram-negative bacilli isolated from clinical samples in the biological laboratories of two selected health facilities in Niger. \nMethodology: Clinical bacterial isolates were randomly collected from two biological laboratories of Zinder National Hospital and Niamey General Reference Hospital. These were multi-resistant Gram-negative bacteria that have been routinely isolated from pathological samples of patients. Molecular detection of resistance genes was carried out by polymerase chain reaction (PCR) amplification using specific primers. These include plasmid-mediated AmpC beta lactamase genes (blaCITM, blaDHAM, blaFOXM), ‘Cefotaxime-Munich’ type beta lactamase genes (blaCTX-M-1, blaCTX-M-2, blaCTX-M-9), KPC-type beta lactamase gene (blaKPC), Oxa-type beta lactamase gene (blaOXA-48), SHV-type beta lactamase gene (blaSHV), TEM-type beta lactamase gene (blaTEM), quinolone resistance genes (qnrA, qnrB, qnrS), and sulfonamide resistance genes (sul1, sul2, sul3). \nResults: A total of 24 strains of multidrug-resistant Gram-negative bacteria isolated from different clinical samples were analysed. The distribution of the resistance genes detected is as follows; AmpC blaCITM (n=6; 25.0%), AmpC blaDHAM (n=4; 17.0%), AmpC blaFOXM (n=0), blaCTX-M-1 (n=11; 46.0%), blaCTX-M-2 (n=0), blaCTX-M-9 (n=0), blaKPC (n=0), blaOXA-48 (n=2; 8..0%), blaSHV (n=5; 21.0%), blaTEM (n=0), qnrA (n=0), qnrB (n=5; 21.0%), qnrS (n=17; 71.0%), sul1 (n=22; 92.0%), sul2 (n=12; 50.0%), and sul3 (n=0). All isolates tested had at least two resistance genes. \nConclusion: The results of this study provide a better understanding of the resistance situation of clinical isolates in Niger. Therefore, it is more than necessary to intensify the detection on a larger number of samples and on a national scale. This will make it possible to assess the true extent of the phenomenon and consequently guide control strategies through a national multisectoral plan. \nContexte: Selon l'Organisation Mondiale de la Santé (OMS), la résistance bactérienne aux antibiotiques constitue un défi mondial de santé publique, qui se développe également au Niger. Le but de cette étude était de déterminer la prévalence des gènes de résistance aux antibiotiques chez les bacilles Gram négatif isolés à partir d'échantillons cliniques dans les laboratoires de biologie de deux formations sanitaires sélectionnées au Niger. \nMéthodologie: Des isolats bactériens cliniques ont été collectés de manière aléatoire dans deux laboratoires de biologie de l'Hôpital National de Zinder et de l'Hôpital Général de Référence de Niamey. Il s’agissait de bactéries Gram-négatives multirésistantes qui ont été systématiquement isolées à partir d’échantillons pathologiques de patients. La détection moléculaire des gènes de résistance a été réalisée par amplification par réaction en chaîne par polymérase (PCR) à l'aide d'amorces spécifiques. Il s'agit notamment des gènes de bêta-lactamase AmpC à médiation plasmidique (blaCITM, blaDHAM, blaFOXM), des gènes de bêta-lactamase de type «Céfotaxime-Munich» (blaCTX-M-1, blaCTX-M-2, blaCTX-M-9), du gène de bêta-lactamase de type KPC (blaKPC), du gène de bêta-lactamase de type Oxa (blaOXA-48), le gène bêta-lactamase de type SHV (blaSHV), le gène bêta-lactamase de type TEM (blaTEM), les gènes de résistance aux quinolones (qnrA, qnrB, qnrS) et les gènes de résistance aux sulfamides (sul1, sul2, sul3). \nRésultats: Au total, 24 souches de bactéries Gram-négatives multirésistantes isolées de différents échantillons cliniques ont été analysées. La répartition des gènes de résistance détectés est la suivante; AmpC blaCITM (n=6; 25,0%), AmpC blaDHAM (n=4; 17,0%), AmpC blaFOXM (n=0), blaCTX-M-1 (n=11; 46,0%), blaCTX-M-2 (n=0), blaCTX-M-9 (n=0), blaKPC (n=0), blaOXA-48 (n=2; 8,0%), blaSHV (n=5; 21,0%), blaTEM (n=0), qnrA (n=0), qnrB (n=5; 21,0%), qnrS (n=17; 71,0%), sul1 (n=22; 92,0%), sul2 (n=12; 50,0%) et sul3 (n=0). Tous les isolats testés possédaient au moins deux gènes de résistance. \nConclusion: Les résultats de cette étude permettent de mieux comprendre la situation de résistance des isolats cliniques au Niger. Il est donc plus que nécessaire d’intensifier la détection sur un plus grand nombre d’échantillons et à l’échelle nationale. Cela permettra d'évaluer l'ampleur réelle du phénomène et par conséquent d'orienter les stratégies de lutte à travers un plan national multisectoriel.","PeriodicalId":7415,"journal":{"name":"African Journal of Clinical and Experimental Microbiology","volume":"611 ","pages":""},"PeriodicalIF":0.0000,"publicationDate":"2024-04-03","publicationTypes":"Journal Article","fieldsOfStudy":null,"isOpenAccess":false,"openAccessPdf":"","citationCount":"0","resultStr":null,"platform":"Semanticscholar","paperid":null,"PeriodicalName":"African Journal of Clinical and Experimental Microbiology","FirstCategoryId":"1085","ListUrlMain":"https://doi.org/10.4314/ajcem.v25i2.6","RegionNum":0,"RegionCategory":null,"ArticlePicture":[],"TitleCN":null,"AbstractTextCN":null,"PMCID":null,"EPubDate":"","PubModel":"","JCR":"","JCRName":"","Score":null,"Total":0}
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Abstract

Background: According to the World Health Organization (WHO), bacterial resistance to antibiotics is a global public health challenge, which is also developing in Niger. The aim of this study was to determine the prevalence of antibiotic resistance genes in Gram-negative bacilli isolated from clinical samples in the biological laboratories of two selected health facilities in Niger. Methodology: Clinical bacterial isolates were randomly collected from two biological laboratories of Zinder National Hospital and Niamey General Reference Hospital. These were multi-resistant Gram-negative bacteria that have been routinely isolated from pathological samples of patients. Molecular detection of resistance genes was carried out by polymerase chain reaction (PCR) amplification using specific primers. These include plasmid-mediated AmpC beta lactamase genes (blaCITM, blaDHAM, blaFOXM), ‘Cefotaxime-Munich’ type beta lactamase genes (blaCTX-M-1, blaCTX-M-2, blaCTX-M-9), KPC-type beta lactamase gene (blaKPC), Oxa-type beta lactamase gene (blaOXA-48), SHV-type beta lactamase gene (blaSHV), TEM-type beta lactamase gene (blaTEM), quinolone resistance genes (qnrA, qnrB, qnrS), and sulfonamide resistance genes (sul1, sul2, sul3). Results: A total of 24 strains of multidrug-resistant Gram-negative bacteria isolated from different clinical samples were analysed. The distribution of the resistance genes detected is as follows; AmpC blaCITM (n=6; 25.0%), AmpC blaDHAM (n=4; 17.0%), AmpC blaFOXM (n=0), blaCTX-M-1 (n=11; 46.0%), blaCTX-M-2 (n=0), blaCTX-M-9 (n=0), blaKPC (n=0), blaOXA-48 (n=2; 8..0%), blaSHV (n=5; 21.0%), blaTEM (n=0), qnrA (n=0), qnrB (n=5; 21.0%), qnrS (n=17; 71.0%), sul1 (n=22; 92.0%), sul2 (n=12; 50.0%), and sul3 (n=0). All isolates tested had at least two resistance genes. Conclusion: The results of this study provide a better understanding of the resistance situation of clinical isolates in Niger. Therefore, it is more than necessary to intensify the detection on a larger number of samples and on a national scale. This will make it possible to assess the true extent of the phenomenon and consequently guide control strategies through a national multisectoral plan. Contexte: Selon l'Organisation Mondiale de la Santé (OMS), la résistance bactérienne aux antibiotiques constitue un défi mondial de santé publique, qui se développe également au Niger. Le but de cette étude était de déterminer la prévalence des gènes de résistance aux antibiotiques chez les bacilles Gram négatif isolés à partir d'échantillons cliniques dans les laboratoires de biologie de deux formations sanitaires sélectionnées au Niger. Méthodologie: Des isolats bactériens cliniques ont été collectés de manière aléatoire dans deux laboratoires de biologie de l'Hôpital National de Zinder et de l'Hôpital Général de Référence de Niamey. Il s’agissait de bactéries Gram-négatives multirésistantes qui ont été systématiquement isolées à partir d’échantillons pathologiques de patients. La détection moléculaire des gènes de résistance a été réalisée par amplification par réaction en chaîne par polymérase (PCR) à l'aide d'amorces spécifiques. Il s'agit notamment des gènes de bêta-lactamase AmpC à médiation plasmidique (blaCITM, blaDHAM, blaFOXM), des gènes de bêta-lactamase de type «Céfotaxime-Munich» (blaCTX-M-1, blaCTX-M-2, blaCTX-M-9), du gène de bêta-lactamase de type KPC (blaKPC), du gène de bêta-lactamase de type Oxa (blaOXA-48), le gène bêta-lactamase de type SHV (blaSHV), le gène bêta-lactamase de type TEM (blaTEM), les gènes de résistance aux quinolones (qnrA, qnrB, qnrS) et les gènes de résistance aux sulfamides (sul1, sul2, sul3). Résultats: Au total, 24 souches de bactéries Gram-négatives multirésistantes isolées de différents échantillons cliniques ont été analysées. La répartition des gènes de résistance détectés est la suivante; AmpC blaCITM (n=6; 25,0%), AmpC blaDHAM (n=4; 17,0%), AmpC blaFOXM (n=0), blaCTX-M-1 (n=11; 46,0%), blaCTX-M-2 (n=0), blaCTX-M-9 (n=0), blaKPC (n=0), blaOXA-48 (n=2; 8,0%), blaSHV (n=5; 21,0%), blaTEM (n=0), qnrA (n=0), qnrB (n=5; 21,0%), qnrS (n=17; 71,0%), sul1 (n=22; 92,0%), sul2 (n=12; 50,0%) et sul3 (n=0). Tous les isolats testés possédaient au moins deux gènes de résistance. Conclusion: Les résultats de cette étude permettent de mieux comprendre la situation de résistance des isolats cliniques au Niger. Il est donc plus que nécessaire d’intensifier la détection sur un plus grand nombre d’échantillons et à l’échelle nationale. Cela permettra d'évaluer l'ampleur réelle du phénomène et par conséquent d'orienter les stratégies de lutte à travers un plan national multisectoriel.
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从尼日尔两家医院的临床样本中分离出的耐多药革兰氏阴性细菌中进行抗菌药耐药性基因的分子检测
背景:据世界卫生组织(WHO)称,细菌对抗生素的耐药性是一项全球性的公共卫生挑战,尼日尔也正在面临这一挑战。本研究旨在确定从尼日尔两家选定医疗机构生物实验室的临床样本中分离出的革兰氏阴性杆菌中抗生素耐药性基因的流行情况。方法:从津德尔国立医院和尼亚美综合参考医院的两个生物实验室中随机收集临床细菌分离物。这些细菌都是从病人病理样本中常规分离出来的多重耐药革兰氏阴性菌。耐药基因的分子检测是通过聚合酶链式反应(PCR)扩增法进行的,使用的是特定的引物。这些基因包括质粒介导的 AmpC β-内酰胺酶基因(blaCITM、blaDHAM、blaFOXM)、"头孢他啶-慕尼黑 "型 β-内酰胺酶基因(blaCTX-M-1、blaCTX-M-2、blaCTX-M-9)、KPC 型 β-内酰胺酶基因(blaKPC)、内酰胺酶基因(blaCTX-M-1、blaCTX-M-2、blaCTX-M-9)、KPC 型内酰胺酶基因(blaKPC)、OXA 型内酰胺酶基因(blaOXA-48)、SHV 型内酰胺酶基因(blaSHV)、TEM 型内酰胺酶基因(blaTEM)、喹诺酮类药物抗性基因(qnrA、qnrB、qnrS)和磺胺类药物抗性基因(sul1、sul2、sul3)。结果:共分析了 24 株从不同临床样本中分离出来的多重耐药革兰氏阴性菌。检测到的耐药基因分布如下:AmpC blaCITM(n=6;25.0%)、AmpC blaDHAM(n=4;17.0%)、AmpC blaFOXM(n=0)、blaCTX-M-1(n=11;46.0%)、blaCTX-M-2(n=0)、blaCTX-M-9(n=0)、blaKPC(n=0)、blaOXA-48(n=2;8.0%)、blaTEM(n=0)、qnrA(n=0)、qnrB(n=5;21.0%)、qnrS(n=17;71.0%)、sul1(n=22;92.0%)、sul2(n=12;50.0%)和 sul3(n=0)。所有检测的分离物至少有两种抗性基因。结论:这项研究的结果使我们对尼日尔临床分离株的耐药性情况有了更好的了解。因此,有必要在全国范围内加强对更多样本的检测。这将有助于评估这一现象的真实程度,从而通过国家多部门计划为控制策略提供指导。背景:据世界卫生组织(WHO)称,细菌对抗生素的耐药性是一项全球性的公共卫生挑战,尼日尔也在发展这一挑战。本研究旨在确定从尼日尔两家选定医疗机构生物实验室的临床样本中分离出的革兰氏阴性杆菌中抗生素耐药性基因的流行情况。方法:从津德尔国立医院和尼亚美综合参考医院的两个生物实验室中随机收集临床细菌分离物。这些细菌是从病人的病理样本中系统分离出来的革兰氏阴性耐多药细菌。耐药基因的分子检测是通过聚合酶链式反应(PCR)扩增法进行的,使用的是特定的引物。这些基因包括质粒介导的 AmpC β-内酰胺酶基因(blaCITM、blaDHAM、blaFOXM)、"头孢他啶-慕尼黑 "型 β-内酰胺酶基因(blaCTX-M-1、blaCTX-M-2、blaCTX-M-9)、KPC 型 β-内酰胺酶基因(blaKPC)、Oxa 型 β-内酰胺酶基因(blaKPC)、Oxa型β-内酰胺酶基因(blaOXA-48)、SHV型β-内酰胺酶基因(blaSHV)、TEM型β-内酰胺酶基因(blaTEM)、喹诺酮类抗性基因(qnrA、qnrB、qnrS)和磺胺类抗性基因(sul1、sul2、sul3)。结果共分析了 24 株从不同临床样本中分离出来的多重耐药革兰氏阴性菌。检测到的耐药基因分布如下:AmpC blaCITM(n=6;25.0%)、AmpC blaDHAM(n=4;17.0%)、AmpC blaFOXM(n=0)、blaCTX-M-1(n=11;46.0%)、blaCTX-M-2(n=0)、blaCTX-M-9(n=0)、blaKPC(n=0)、blaOXA-48(n=2;8.0%)、blaSHV(n=5;21.0%)、blaTEM(n=0)、qnrA(n=0)、qnrB(n=5;21.0%)、qnrS(n=17;71.0%)、sul1(n=22;92.0%)、sul2(n=12;50.0%)和 sul3(n=0)。所有检测的分离物至少有两种抗性基因。结论:这项研究的结果使我们对尼日尔临床分离株的耐药性情况有了更好的了解。因此,有必要在全国范围内加强对更多样本的检测。这样才有可能评估这一现象的真实规模,从而通过国家多部门计划来指导控制策略。
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