Current quantitative methodologies for preimplantation genetic testing frequently misclassify meiotic aneuploidies as mosaic

IF 7 1区 医学 Q1 OBSTETRICS & GYNECOLOGY Fertility and sterility Pub Date : 2025-02-15 DOI:10.1016/j.fertnstert.2025.02.018
Teodora Popa Ph.D. , Colin Davis M.B.B.S. , Leoni Xanthopoulou Ph.D. , Evangelia Bakosi M.Sc. , Chloe He M.Sc. , Helen O’Neill Ph.D. , Christian Simon Ottolini Ph.D.
{"title":"Current quantitative methodologies for preimplantation genetic testing frequently misclassify meiotic aneuploidies as mosaic","authors":"Teodora Popa Ph.D. ,&nbsp;Colin Davis M.B.B.S. ,&nbsp;Leoni Xanthopoulou Ph.D. ,&nbsp;Evangelia Bakosi M.Sc. ,&nbsp;Chloe He M.Sc. ,&nbsp;Helen O’Neill Ph.D. ,&nbsp;Christian Simon Ottolini Ph.D.","doi":"10.1016/j.fertnstert.2025.02.018","DOIUrl":null,"url":null,"abstract":"<div><h3>Objective</h3><div>To study the biological origin of chromosomal abnormalities in embryos reported as mosaic after next-generation sequencing (NGS)-based preimplantation genetic testing for aneuploidy (PGT-A) and to assess the accuracy of current NGS-based methods in distinguishing meiotic from mitotic errors.</div></div><div><h3>Design</h3><div>Retrospective cohort study utilizing single-nucleotide polymorphism genotyping and karyomapping to identify meiotic aneuploidy in clinically reported mosaic embryos.</div></div><div><h3>Subjects</h3><div>A total of 146 embryos from 87 patients who underwent in vitro fertilization cycles with NGS-based PGT-A between 2018 and 2020 at The Evewell, London, United Kingdom.</div></div><div><h3>Exposure</h3><div>Embryos underwent clinical NGS-based PGT-A to identify chromosomal abnormalities. Haplotype-based methods such as single-nucleotide polymorphism-based genotyping and karyomapping were performed on the same amplified material used for NGS-based PGT-A to determine the origin of the chromosomal errors.</div></div><div><h3>Main Outcome Measures</h3><div>The proportion of embryos reported as mosaic by NGS that contained meiotic errors, and the distribution of meiotic vs. mitotic origin among chromosomal abnormalities identified in the mosaic range.</div></div><div><h3>Results</h3><div>Of the 141 embryos identified as mosaic after NGS-based PGT-A, 32.6% (n = 46/141) contained an error of meiotic origin, challenging their classification as “mosaic embryos.” In total, 191 individual chromosomal errors were reported in the mosaic range by NGS-based PGT-A. Of those, 29.3% (56/191) errors (both below and above the 50% copy number threshold) were found to be of meiotic origin. The majority (94.6%) of meiotic errors were maternal in origin. Embryos with multiple chromosomal abnormalities were significantly more likely to have at least one meiotic error. Higher intermediate copy number values correlated with an increased probability of an error being of meiotic origin.</div></div><div><h3>Conclusion</h3><div>This study presents the first direct evidence that a third of embryos reported as mosaic (both low- and high-level mosaic) by NGS-based PGT-A contain meiotic errors, highlighting the potential misclassification of aneuploid embryos as mosaic by current NGS-based PGT-A methods that cannot accurately distinguishing between meiotic and mitotic errors. Single-nucleotide polymorphism genotyping provides essential information for accurately determining the origin of chromosomal abnormalities and should be integrated with NGS-based copy number analysis to enhance diagnostic accuracy. Further studies are needed to refine mosaicism classification and to better understand its true implications in in vitro fertilization treatment.</div></div><div><div>Las metodologías cuantitativas actuales para las pruebas genéticas de preimplantación suelen clasificar erróneamente las aneuploidías meióticas como mosaicos.</div></div><div><h3>Objetivo</h3><div>Estudiar el origen biológico de las anomalías cromosómicas en embriones reportados como mosaicos después de realizar pruebas genéticas preimplantacionales para aneuploidías (PGT-A) basadas en secuenciación de nueva generación (NGS), y evaluar la precisión de los métodos actuales basados en NGS para distinguir errores meióticos de errores mitóticos.</div></div><div><h3>Diseño</h3><div>Estudio de cohorte retrospectivo utilizando genotipado de polimorfismos de un solo nucleótido y cariomapa para identificar aneuploidías meióticas en embriones clínicamente reportados como mosaicos.</div></div><div><h3>Sujetos</h3><div>Un total de 146 embriones de 87 pacientes que se sometieron a ciclos de fertilización in vitro con PGT-A basado en NGS entre 2018 y 2020 en The Evewell, Londres, Reino Unido.</div></div><div><h3>Procedimiento</h3><div>Los embriones se sometieron a PGT-A clínico basado en NGS para identificar anomalías cromosómicas. Métodos basados en haplotipos, tales como el genotipado basado en SNP y el cariomapa fueron realizados sobre el mismo material amplificado utilizado para el PGT-A con el fin de determinar el origen de los errores cromosómicos.</div></div><div><h3>Medidas de resultado principales</h3><div>La proporción de embriones reportados como mosaicos por NGS que contenían errores de origen meiótico, y la distribución del origen meiótico versus mitótico entre las anomalías cromosómicas identificadas en el rango de mosaicismo.</div></div><div><h3>Resultados</h3><div>De los 141 embriones identificados como mosaicos tras el PGT-A basado en NGS, el 32.6% (n = 46/141) contenía un error de origen meiótico, lo cual pone en duda su clasificación como \"embriones mosaicos\". En total, se reportaron 191 errores cromosómicos individuales en el rango de mosaicismo por PGT-A basado en NGS. De estos, el 29.3% (56/191) de los errores (tanto por debajo como por encima del umbral del 50% de número de copias) fueron de origen meiótico. La mayoría (94.6%) de los errores meióticos fueron de origen materno. Los embriones con múltiples anomalías cromosómicas tenían una probabilidad significativamente mayor de presentar al menos un error meiótico. Valores intermedios más altos en el número de copias se correlacionaron con una mayor probabilidad de que el error fuera de origen meiótico.</div></div><div><h3>Conclusión</h3><div>Este estudio presenta la primera evidencia directa de que un tercio de los embriones reportados como mosaicos (tanto de bajo como de alto nivel) por PGT-A basado en NGS contienen errores meióticos, resaltando la posible clasificación errónea de embriones aneuploides como mosaicos por los métodos actuales de PGT-A basados en NGS, los cuales no pueden distinguir con precisión entre errores meióticos y mitóticos. El genotipado de polimorfismos de un solo nucleótido proporciona información esencial para determinar con precisión el origen de las anomalías cromosómicas y debería integrarse con el análisis de número de copias basado en NGS para mejorar la precisión diagnóstica. Se necesitan más estudios para refinar la clasificación del mosaicismo y comprender mejor sus verdaderas implicaciones en el tratamiento de fertilización in vitro.</div></div>","PeriodicalId":12275,"journal":{"name":"Fertility and sterility","volume":"124 2","pages":"Pages 307-318"},"PeriodicalIF":7.0000,"publicationDate":"2025-02-15","publicationTypes":"Journal Article","fieldsOfStudy":null,"isOpenAccess":false,"openAccessPdf":"","citationCount":"0","resultStr":null,"platform":"Semanticscholar","paperid":null,"PeriodicalName":"Fertility and sterility","FirstCategoryId":"3","ListUrlMain":"https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0015028225001013","RegionNum":1,"RegionCategory":"医学","ArticlePicture":[],"TitleCN":null,"AbstractTextCN":null,"PMCID":null,"EPubDate":"","PubModel":"","JCR":"Q1","JCRName":"OBSTETRICS & GYNECOLOGY","Score":null,"Total":0}
引用次数: 0

Abstract

Objective

To study the biological origin of chromosomal abnormalities in embryos reported as mosaic after next-generation sequencing (NGS)-based preimplantation genetic testing for aneuploidy (PGT-A) and to assess the accuracy of current NGS-based methods in distinguishing meiotic from mitotic errors.

Design

Retrospective cohort study utilizing single-nucleotide polymorphism genotyping and karyomapping to identify meiotic aneuploidy in clinically reported mosaic embryos.

Subjects

A total of 146 embryos from 87 patients who underwent in vitro fertilization cycles with NGS-based PGT-A between 2018 and 2020 at The Evewell, London, United Kingdom.

Exposure

Embryos underwent clinical NGS-based PGT-A to identify chromosomal abnormalities. Haplotype-based methods such as single-nucleotide polymorphism-based genotyping and karyomapping were performed on the same amplified material used for NGS-based PGT-A to determine the origin of the chromosomal errors.

Main Outcome Measures

The proportion of embryos reported as mosaic by NGS that contained meiotic errors, and the distribution of meiotic vs. mitotic origin among chromosomal abnormalities identified in the mosaic range.

Results

Of the 141 embryos identified as mosaic after NGS-based PGT-A, 32.6% (n = 46/141) contained an error of meiotic origin, challenging their classification as “mosaic embryos.” In total, 191 individual chromosomal errors were reported in the mosaic range by NGS-based PGT-A. Of those, 29.3% (56/191) errors (both below and above the 50% copy number threshold) were found to be of meiotic origin. The majority (94.6%) of meiotic errors were maternal in origin. Embryos with multiple chromosomal abnormalities were significantly more likely to have at least one meiotic error. Higher intermediate copy number values correlated with an increased probability of an error being of meiotic origin.

Conclusion

This study presents the first direct evidence that a third of embryos reported as mosaic (both low- and high-level mosaic) by NGS-based PGT-A contain meiotic errors, highlighting the potential misclassification of aneuploid embryos as mosaic by current NGS-based PGT-A methods that cannot accurately distinguishing between meiotic and mitotic errors. Single-nucleotide polymorphism genotyping provides essential information for accurately determining the origin of chromosomal abnormalities and should be integrated with NGS-based copy number analysis to enhance diagnostic accuracy. Further studies are needed to refine mosaicism classification and to better understand its true implications in in vitro fertilization treatment.
Las metodologías cuantitativas actuales para las pruebas genéticas de preimplantación suelen clasificar erróneamente las aneuploidías meióticas como mosaicos.

Objetivo

Estudiar el origen biológico de las anomalías cromosómicas en embriones reportados como mosaicos después de realizar pruebas genéticas preimplantacionales para aneuploidías (PGT-A) basadas en secuenciación de nueva generación (NGS), y evaluar la precisión de los métodos actuales basados en NGS para distinguir errores meióticos de errores mitóticos.

Diseño

Estudio de cohorte retrospectivo utilizando genotipado de polimorfismos de un solo nucleótido y cariomapa para identificar aneuploidías meióticas en embriones clínicamente reportados como mosaicos.

Sujetos

Un total de 146 embriones de 87 pacientes que se sometieron a ciclos de fertilización in vitro con PGT-A basado en NGS entre 2018 y 2020 en The Evewell, Londres, Reino Unido.

Procedimiento

Los embriones se sometieron a PGT-A clínico basado en NGS para identificar anomalías cromosómicas. Métodos basados en haplotipos, tales como el genotipado basado en SNP y el cariomapa fueron realizados sobre el mismo material amplificado utilizado para el PGT-A con el fin de determinar el origen de los errores cromosómicos.

Medidas de resultado principales

La proporción de embriones reportados como mosaicos por NGS que contenían errores de origen meiótico, y la distribución del origen meiótico versus mitótico entre las anomalías cromosómicas identificadas en el rango de mosaicismo.

Resultados

De los 141 embriones identificados como mosaicos tras el PGT-A basado en NGS, el 32.6% (n = 46/141) contenía un error de origen meiótico, lo cual pone en duda su clasificación como "embriones mosaicos". En total, se reportaron 191 errores cromosómicos individuales en el rango de mosaicismo por PGT-A basado en NGS. De estos, el 29.3% (56/191) de los errores (tanto por debajo como por encima del umbral del 50% de número de copias) fueron de origen meiótico. La mayoría (94.6%) de los errores meióticos fueron de origen materno. Los embriones con múltiples anomalías cromosómicas tenían una probabilidad significativamente mayor de presentar al menos un error meiótico. Valores intermedios más altos en el número de copias se correlacionaron con una mayor probabilidad de que el error fuera de origen meiótico.

Conclusión

Este estudio presenta la primera evidencia directa de que un tercio de los embriones reportados como mosaicos (tanto de bajo como de alto nivel) por PGT-A basado en NGS contienen errores meióticos, resaltando la posible clasificación errónea de embriones aneuploides como mosaicos por los métodos actuales de PGT-A basados en NGS, los cuales no pueden distinguir con precisión entre errores meióticos y mitóticos. El genotipado de polimorfismos de un solo nucleótido proporciona información esencial para determinar con precisión el origen de las anomalías cromosómicas y debería integrarse con el análisis de número de copias basado en NGS para mejorar la precisión diagnóstica. Se necesitan más estudios para refinar la clasificación del mosaicismo y comprender mejor sus verdaderas implicaciones en el tratamiento de fertilización in vitro.
查看原文
分享 分享
微信好友 朋友圈 QQ好友 复制链接
本刊更多论文
目前用于植入前基因检测的定量方法经常将减数分裂非整倍体错误地分类为镶嵌体。
目的:研究基于下一代测序(NGS)的胚胎非整倍体着床前基因检测(PGT-A)后报道的镶嵌胚胎染色体异常的生物学起源,并评估当前基于NGS的方法在区分减数分裂和有丝分裂错误方面的准确性。设计:回顾性队列研究,利用单核苷酸多态性(SNP)基因分型和核组图鉴定临床报道的马赛克胚胎的减数分裂非整倍体。研究对象:来自87名患者的146个胚胎,这些患者在2018年至2020年期间在英国伦敦的伊夫韦尔接受了基于ngs - PGT-A的体外受精周期。暴露:胚胎接受临床基于ngs的PGT-A鉴定染色体异常。基于单倍型的方法,如基于snp的基因分型和核配图,在用于NGS-based PGT-A的相同扩增材料上进行,以确定染色体错误的起源。主要结局指标:NGS报告的嵌合体胚胎中含有减数分裂错误的比例,以及在嵌合体范围内鉴定的染色体异常中减数分裂和有丝分裂起源的分布。结果:在基于ngs的PGT-A鉴定的141个嵌合体胚胎中,32.6% (n=46/141)包含减数分裂起源错误,对其“嵌合体胚胎”的分类提出了挑战。基于ngs的PGT-A共报告了191例染色体镶嵌范围内的个体染色体错误。其中,29.3%(56/191)的错误(低于和高于50%拷贝数阈值)被发现是减数分裂起源。绝大多数(94.6%)减数分裂错误源自母体。多染色体异常的胚胎至少有一个减数分裂错误的可能性更大。较高的中间拷贝数值与减数分裂起源错误的可能性增加相关。结论:本研究首次提供了直接证据,表明基于ngs的PGT-A报道的嵌合体胚胎(包括低嵌合体和高嵌合体)中有三分之一含有减数分裂错误,突出了当前基于ngs的PGT-A方法无法准确区分减数分裂和有丝分裂错误的非整倍体胚胎可能被错误分类为嵌合体。SNP基因分型为准确确定染色体异常的起源提供了必要的信息,应与基于ngs的拷贝数分析相结合,以提高诊断的准确性。需要进一步的研究来完善嵌合分类,并更好地了解其在体外受精治疗中的真正意义。
本文章由计算机程序翻译,如有差异,请以英文原文为准。
求助全文
约1分钟内获得全文 去求助
来源期刊
Fertility and sterility
Fertility and sterility 医学-妇产科学
CiteScore
11.30
自引率
6.00%
发文量
1446
审稿时长
31 days
期刊介绍: Fertility and Sterility® is an international journal for obstetricians, gynecologists, reproductive endocrinologists, urologists, basic scientists and others who treat and investigate problems of infertility and human reproductive disorders. The journal publishes juried original scientific articles in clinical and laboratory research relevant to reproductive endocrinology, urology, andrology, physiology, immunology, genetics, contraception, and menopause. Fertility and Sterility® encourages and supports meaningful basic and clinical research, and facilitates and promotes excellence in professional education, in the field of reproductive medicine.
期刊最新文献
Expression of concern ‘Induction of ovulation using clomiphene citrate plus N-Acetyl cysteine versus letrozole in infertile patients with polycystic ovarian disease: a randomized clinical trial’ [Fertil Steril 2018; 110: e102] Expression of concern ‘A randomized controlled trial of oral diclofenac potassium for analgesic control during office hysteroscopy’ [Fertil Steril 2017; 108: e15] Expression of Concern ‘Self-administered vaginal lidocaine in-situ gel prior to intrauterine device insertion is an effective analgesic in women with no previous vaginal delivery’ [Fertil Steril 2019; 112: e306] Expression of Concern ‘Effect of cell-phone assisted postpartum counseling on the use of long-acting reversible contraceptives: a randomized controlled trial’ [Fertil Steril 2019; 112: e9] Too Fast, Too Frozen: Rethinking Sperm Cryopreservation.
×
引用
GB/T 7714-2015
复制
MLA
复制
APA
复制
导出至
BibTeX EndNote RefMan NoteFirst NoteExpress
×
×
提示
您的信息不完整,为了账户安全,请先补充。
现在去补充
×
提示
您因"违规操作"
具体请查看互助需知
我知道了
×
提示
现在去查看 取消
×
提示
确定
0
微信
客服QQ
Book学术公众号 扫码关注我们
反馈
×
意见反馈
请填写您的意见或建议
请填写您的手机或邮箱
已复制链接
已复制链接
快去分享给好友吧!
我知道了
×
扫码分享
扫码分享
Book学术官方微信
Book学术文献互助
Book学术文献互助群
群 号:604180095
Book学术
文献互助 智能选刊 最新文献 互助须知 联系我们:info@booksci.cn
Book学术提供免费学术资源搜索服务,方便国内外学者检索中英文文献。致力于提供最便捷和优质的服务体验。
Copyright © 2023 Book学术 All rights reserved.
ghs 京公网安备 11010802042870号 京ICP备2023020795号-1