巨噬细胞上的 LRRC8A 渗透敏感通道和 P2Y 嘌呤能受体在微晶炎症中发挥核心作用

T.W. Chirayah , M. Ollivier , M. Kayatekin , I. Rubera , C.N. Pham , C. Combes , P. Richette , A. Latourte , F. Rassendren , V. Compan , C. Duranton , H.K. Ea
{"title":"巨噬细胞上的 LRRC8A 渗透敏感通道和 P2Y 嘌呤能受体在微晶炎症中发挥核心作用","authors":"T.W. Chirayah ,&nbsp;M. Ollivier ,&nbsp;M. Kayatekin ,&nbsp;I. Rubera ,&nbsp;C.N. Pham ,&nbsp;C. Combes ,&nbsp;P. Richette ,&nbsp;A. Latourte ,&nbsp;F. Rassendren ,&nbsp;V. Compan ,&nbsp;C. Duranton ,&nbsp;H.K. Ea","doi":"10.1016/j.rhum.2024.10.306","DOIUrl":null,"url":null,"abstract":"<div><h3>Introduction</h3><div>L’inflammation induite par les cristaux d’urate de sodium (UMS) et de pyrophosphate de calcium (PPC) dépend de l’interleukine (IL)-1β dont la production est régulée par l’inflammasome NLRP3. NLRP3 peut être activé par des variations de l’osmolarité. Lors d’un stress hypotonique extracellulaire, il se produit un gonflement cellulaire par entrée d’eau osmo-induite, suivi d’un mécanisme de régulation, appelé <em>regulatory volume decrease</em> (RVD), permettant un retour au volume initial. Ce mécanisme RVD dépend du canal anionique LRRC8. Nos objectifs sont de déterminer comment le canal osmo-sensible LRRC8 régule l’inflammation induite par les cristaux.</div></div><div><h3>Matériels et méthodes</h3><div>In vitro, les monocytes de la lignée humaine THP1, les macrophages murins isolés de la moelle osseuse (BMDM) sont stimulés par des cristaux synthétiques dans des milieux de culture iso-, hypo- ou hypertoniques. Le rôle du canal LRRC8A est évalué en utilisant un inhibiteur pharmacologique (DCPIB) et des cellules dont l’expression de LRRC8A est délétée par shRNA ou knock-down (KO). La production des cytokines inflammatoires et de l’ATP est dosée par ELISA. Les courants chlorure et ATP sont enregistrés par patch-clamp. La taille des cellules est évaluée par méthodes de fluorescence. In vivo, l’inflammation a été évaluée dans le modèle de poche à air sur des souris sauvages (notées <em>Lrrc8Acont</em>) et des souris dont LRRC8A est invalidé dans la lignée macrophagique (notées <em>Lrrc8AΔMo</em>).</div></div><div><h3>Résultats</h3><div>Les liquides articulaires prélevés au cours de l’inflammation microcristalline (goutte et PPC) avaient une concentration en IL-1β et IL-8 plus forte que les liquides d’arthrose. En revanche, leur osmolarité était plus basse et inversement corrélée à la concentration des cytokines. Dans le modèle murin, l’augmentation de l’osmolarité plasmatique par injection de mannitol diminuait l’inflammation induite par les cristaux, en termes d’infiltrat cellulaire et de production des cytokines inflammatoires. L’inhibition des aquaporines par du chlorure de mercure (HgCl2) diminuait également l’inflammation microcristalline. In vitro, les cellules THP-1 et BDMD traitées par HgCl2 diminuaient de façon substantielle la production d’IL-1β et l’activation de l’inflammasome NLRP3 induites par les cristaux. De plus, la production de l’IL-1β était diminué lorsque les cellules étaient cultivées en milieu hypertonique et augmentées en milieu hypotonique. Les cristaux induisaient une augmentation du volume cellulaire suivi d’un retour au volume initial, mimant le phénomène de RVD induit par une stimulation hypotonique. Celle-ci induisait la production d’un courant chlorure sortant suggérant l’implication du canal LRRC8. Ce phénomène de RVD et le courant chlorure n’étaient plus observés dans les cellules dont l’expression de LRRC8A est délétée ou dans les cellules traitées par DCPIB. In vivo, l’inflammation induite par les cristaux d’UMS et de PPC était diminuée chez les souris <em>Lrrc8AΔMo</em> par aux souris <em>Lrrc8Acont</em>. Les BMDM isolés souris <em>Lrrc8AΔMo</em> produisaient moins d’IL-1β par rapport aux BDMD isolés des souris <em>Lrrc8Acont</em>. Enfin, nous observons que les cristaux d’UMS et de PPC induisaient une libération extracellulaire d’ATP via le canal LRRC8. Cette libération d’ATP précédait le phénomène de RVD et était nécessaire à l’activation de l’inflammasome NLRP3 et de la production de l’IL-1β via les récepteurs purinergiques P2Y et le calcium intracellulaire.</div></div><div><h3>Conclusion</h3><div>Nos résultats mettent en évidence de nouveaux mécanismes de l’inflammation microcristalline avec un rôle central du canal osmo-sensible LRRC8 et des récepteurs purinergiques P2Y (<span><span>Fig. 1</span></span>) au cours des crises microcristallines, les cristaux et l’hypo-osmolarité du liquide articulaire induisent un gonflement des macrophages, ce qui active le canal anionique régulateur de volume (VRAC) LRRC8 aboutissant à la libération de l’ATP. L’ATP par action paracrine et autocrine active les récepteurs purinergiques P2Y2 et P2Y6 qui via la phospholipase C (PLC) et le calcium intracellulaire participe à l’activation de l’inflammasome NLRP3 et à la production de l’IL-1β.</div></div>","PeriodicalId":38943,"journal":{"name":"Revue du Rhumatisme (Edition Francaise)","volume":"91 ","pages":"Pages A24-A25"},"PeriodicalIF":0.0000,"publicationDate":"2024-11-26","publicationTypes":"Journal Article","fieldsOfStudy":null,"isOpenAccess":false,"openAccessPdf":"","citationCount":"0","resultStr":"{\"title\":\"Le canal osmo-sensible LRRC8A et les récepteurs purinergiques P2Y des macrophages occupent une place centrale dans l’inflammation microcristalline\",\"authors\":\"T.W. Chirayah ,&nbsp;M. Ollivier ,&nbsp;M. Kayatekin ,&nbsp;I. Rubera ,&nbsp;C.N. Pham ,&nbsp;C. Combes ,&nbsp;P. Richette ,&nbsp;A. Latourte ,&nbsp;F. Rassendren ,&nbsp;V. Compan ,&nbsp;C. Duranton ,&nbsp;H.K. 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In vivo, l’inflammation a été évaluée dans le modèle de poche à air sur des souris sauvages (notées <em>Lrrc8Acont</em>) et des souris dont LRRC8A est invalidé dans la lignée macrophagique (notées <em>Lrrc8AΔMo</em>).</div></div><div><h3>Résultats</h3><div>Les liquides articulaires prélevés au cours de l’inflammation microcristalline (goutte et PPC) avaient une concentration en IL-1β et IL-8 plus forte que les liquides d’arthrose. En revanche, leur osmolarité était plus basse et inversement corrélée à la concentration des cytokines. Dans le modèle murin, l’augmentation de l’osmolarité plasmatique par injection de mannitol diminuait l’inflammation induite par les cristaux, en termes d’infiltrat cellulaire et de production des cytokines inflammatoires. L’inhibition des aquaporines par du chlorure de mercure (HgCl2) diminuait également l’inflammation microcristalline. In vitro, les cellules THP-1 et BDMD traitées par HgCl2 diminuaient de façon substantielle la production d’IL-1β et l’activation de l’inflammasome NLRP3 induites par les cristaux. De plus, la production de l’IL-1β était diminué lorsque les cellules étaient cultivées en milieu hypertonique et augmentées en milieu hypotonique. Les cristaux induisaient une augmentation du volume cellulaire suivi d’un retour au volume initial, mimant le phénomène de RVD induit par une stimulation hypotonique. Celle-ci induisait la production d’un courant chlorure sortant suggérant l’implication du canal LRRC8. Ce phénomène de RVD et le courant chlorure n’étaient plus observés dans les cellules dont l’expression de LRRC8A est délétée ou dans les cellules traitées par DCPIB. In vivo, l’inflammation induite par les cristaux d’UMS et de PPC était diminuée chez les souris <em>Lrrc8AΔMo</em> par aux souris <em>Lrrc8Acont</em>. Les BMDM isolés souris <em>Lrrc8AΔMo</em> produisaient moins d’IL-1β par rapport aux BDMD isolés des souris <em>Lrrc8Acont</em>. Enfin, nous observons que les cristaux d’UMS et de PPC induisaient une libération extracellulaire d’ATP via le canal LRRC8. Cette libération d’ATP précédait le phénomène de RVD et était nécessaire à l’activation de l’inflammasome NLRP3 et de la production de l’IL-1β via les récepteurs purinergiques P2Y et le calcium intracellulaire.</div></div><div><h3>Conclusion</h3><div>Nos résultats mettent en évidence de nouveaux mécanismes de l’inflammation microcristalline avec un rôle central du canal osmo-sensible LRRC8 et des récepteurs purinergiques P2Y (<span><span>Fig. 1</span></span>) au cours des crises microcristallines, les cristaux et l’hypo-osmolarité du liquide articulaire induisent un gonflement des macrophages, ce qui active le canal anionique régulateur de volume (VRAC) LRRC8 aboutissant à la libération de l’ATP. L’ATP par action paracrine et autocrine active les récepteurs purinergiques P2Y2 et P2Y6 qui via la phospholipase C (PLC) et le calcium intracellulaire participe à l’activation de l’inflammasome NLRP3 et à la production de l’IL-1β.</div></div>\",\"PeriodicalId\":38943,\"journal\":{\"name\":\"Revue du Rhumatisme (Edition Francaise)\",\"volume\":\"91 \",\"pages\":\"Pages A24-A25\"},\"PeriodicalIF\":0.0000,\"publicationDate\":\"2024-11-26\",\"publicationTypes\":\"Journal Article\",\"fieldsOfStudy\":null,\"isOpenAccess\":false,\"openAccessPdf\":\"\",\"citationCount\":\"0\",\"resultStr\":null,\"platform\":\"Semanticscholar\",\"paperid\":null,\"PeriodicalName\":\"Revue du Rhumatisme (Edition Francaise)\",\"FirstCategoryId\":\"1085\",\"ListUrlMain\":\"https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S1169833024005349\",\"RegionNum\":0,\"RegionCategory\":null,\"ArticlePicture\":[],\"TitleCN\":null,\"AbstractTextCN\":null,\"PMCID\":null,\"EPubDate\":\"\",\"PubModel\":\"\",\"JCR\":\"Q4\",\"JCRName\":\"Medicine\",\"Score\":null,\"Total\":0}","platform":"Semanticscholar","paperid":null,"PeriodicalName":"Revue du Rhumatisme (Edition Francaise)","FirstCategoryId":"1085","ListUrlMain":"https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S1169833024005349","RegionNum":0,"RegionCategory":null,"ArticlePicture":[],"TitleCN":null,"AbstractTextCN":null,"PMCID":null,"EPubDate":"","PubModel":"","JCR":"Q4","JCRName":"Medicine","Score":null,"Total":0}
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摘要

导言尿酸钠(UMS)和焦磷酸钙(CPP)结晶诱发的炎症取决于白细胞介素(IL)-1β,其产生受 NLRP3 炎性体的调节。渗透压的变化可激活 NLRP3。在出现细胞外低渗应激时,细胞会因渗透压引起的进水而肿胀,随后会出现调节性体积下降(RVD)机制,使细胞体积恢复到初始水平。这种 RVD 机制依赖于 LRRC8 阴离子通道。我们的目标是确定 LRRC8 对渗透压敏感的通道是如何调节晶体诱导的炎症的。使用药理抑制剂(DCPIB)和通过 shRNA 或基因敲除(KO)删除 LRRC8A 表达的细胞来评估 LRRC8A 通道的作用。炎症细胞因子和 ATP 的产生通过 ELISA 进行检测。通过膜片钳记录氯化物和 ATP 电流。使用荧光方法评估细胞大小。结果 在微晶炎症(痛风和 PPC)期间收集的关节液的 IL-1β 和 IL-8 浓度高于 OA 液。然而,它们的渗透压较低,且与细胞因子浓度成反比。在小鼠模型中,通过注射甘露醇提高血浆渗透压可减少晶体诱导的炎症细胞浸润和炎症细胞因子的产生。用氯化汞(HgCl2)抑制水蒸素也能减轻微晶诱发的炎症。在体外,用氯化汞处理的 THP-1 和 BDMD 细胞大大减少了晶体诱导的 IL-1β 的产生和 NLRP3 炎性体的激活。此外,当细胞在高渗培养基中培养时,IL-1β的产生减少,而在低渗培养基中则增加。晶体诱导细胞体积增大,随后恢复到初始体积,模拟了低渗刺激诱导的 RVD 现象。这诱导产生了外向氯离子电流,表明 LRRC8 通道参与其中。在删除了 LRRC8A 表达的细胞或用 DCPIB 处理的细胞中,不再观察到这种 RVD 现象和氯离子电流。与 Lrrc8Acont 小鼠相比,Lrrc8AΔMo 小鼠体内由 UMS 和 PPC 晶体诱发的炎症有所减轻。与 Lrrc8Acont 小鼠相比,从 Lrrc8AΔMo 小鼠分离的 BDMDs 产生的 IL-1β 更少。 最后,我们观察到 UMS 和 PPC 晶体通过 LRRC8 通道诱导细胞外 ATP 释放。这种 ATP 释放先于 RVD 现象,是通过 P2Y 嘌呤能受体和细胞内钙激活 NLRP3 炎症体和产生 IL-1β 的必要条件。1)在微晶危机期间,晶体和关节液的低渗透性诱发巨噬细胞肿胀,从而激活 LRRC8 容积调节阴离子通道(VRAC),导致 ATP 释放。ATP 的旁分泌和自分泌作用激活了 P2Y2 和 P2Y6 嘌呤能受体,它们通过磷脂酶 C(PLC)和细胞内钙参与激活 NLRP3 炎症体和产生 IL-1β。
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Le canal osmo-sensible LRRC8A et les récepteurs purinergiques P2Y des macrophages occupent une place centrale dans l’inflammation microcristalline

Introduction

L’inflammation induite par les cristaux d’urate de sodium (UMS) et de pyrophosphate de calcium (PPC) dépend de l’interleukine (IL)-1β dont la production est régulée par l’inflammasome NLRP3. NLRP3 peut être activé par des variations de l’osmolarité. Lors d’un stress hypotonique extracellulaire, il se produit un gonflement cellulaire par entrée d’eau osmo-induite, suivi d’un mécanisme de régulation, appelé regulatory volume decrease (RVD), permettant un retour au volume initial. Ce mécanisme RVD dépend du canal anionique LRRC8. Nos objectifs sont de déterminer comment le canal osmo-sensible LRRC8 régule l’inflammation induite par les cristaux.

Matériels et méthodes

In vitro, les monocytes de la lignée humaine THP1, les macrophages murins isolés de la moelle osseuse (BMDM) sont stimulés par des cristaux synthétiques dans des milieux de culture iso-, hypo- ou hypertoniques. Le rôle du canal LRRC8A est évalué en utilisant un inhibiteur pharmacologique (DCPIB) et des cellules dont l’expression de LRRC8A est délétée par shRNA ou knock-down (KO). La production des cytokines inflammatoires et de l’ATP est dosée par ELISA. Les courants chlorure et ATP sont enregistrés par patch-clamp. La taille des cellules est évaluée par méthodes de fluorescence. In vivo, l’inflammation a été évaluée dans le modèle de poche à air sur des souris sauvages (notées Lrrc8Acont) et des souris dont LRRC8A est invalidé dans la lignée macrophagique (notées Lrrc8AΔMo).

Résultats

Les liquides articulaires prélevés au cours de l’inflammation microcristalline (goutte et PPC) avaient une concentration en IL-1β et IL-8 plus forte que les liquides d’arthrose. En revanche, leur osmolarité était plus basse et inversement corrélée à la concentration des cytokines. Dans le modèle murin, l’augmentation de l’osmolarité plasmatique par injection de mannitol diminuait l’inflammation induite par les cristaux, en termes d’infiltrat cellulaire et de production des cytokines inflammatoires. L’inhibition des aquaporines par du chlorure de mercure (HgCl2) diminuait également l’inflammation microcristalline. In vitro, les cellules THP-1 et BDMD traitées par HgCl2 diminuaient de façon substantielle la production d’IL-1β et l’activation de l’inflammasome NLRP3 induites par les cristaux. De plus, la production de l’IL-1β était diminué lorsque les cellules étaient cultivées en milieu hypertonique et augmentées en milieu hypotonique. Les cristaux induisaient une augmentation du volume cellulaire suivi d’un retour au volume initial, mimant le phénomène de RVD induit par une stimulation hypotonique. Celle-ci induisait la production d’un courant chlorure sortant suggérant l’implication du canal LRRC8. Ce phénomène de RVD et le courant chlorure n’étaient plus observés dans les cellules dont l’expression de LRRC8A est délétée ou dans les cellules traitées par DCPIB. In vivo, l’inflammation induite par les cristaux d’UMS et de PPC était diminuée chez les souris Lrrc8AΔMo par aux souris Lrrc8Acont. Les BMDM isolés souris Lrrc8AΔMo produisaient moins d’IL-1β par rapport aux BDMD isolés des souris Lrrc8Acont. Enfin, nous observons que les cristaux d’UMS et de PPC induisaient une libération extracellulaire d’ATP via le canal LRRC8. Cette libération d’ATP précédait le phénomène de RVD et était nécessaire à l’activation de l’inflammasome NLRP3 et de la production de l’IL-1β via les récepteurs purinergiques P2Y et le calcium intracellulaire.

Conclusion

Nos résultats mettent en évidence de nouveaux mécanismes de l’inflammation microcristalline avec un rôle central du canal osmo-sensible LRRC8 et des récepteurs purinergiques P2Y (Fig. 1) au cours des crises microcristallines, les cristaux et l’hypo-osmolarité du liquide articulaire induisent un gonflement des macrophages, ce qui active le canal anionique régulateur de volume (VRAC) LRRC8 aboutissant à la libération de l’ATP. L’ATP par action paracrine et autocrine active les récepteurs purinergiques P2Y2 et P2Y6 qui via la phospholipase C (PLC) et le calcium intracellulaire participe à l’activation de l’inflammasome NLRP3 et à la production de l’IL-1β.
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